Protocole d’extraction de l’ARN sur colonne QIAGEN
MATERIELS ET PRODUITS UTILISES
Kit Rneasy Mini Handbook QIAGEN N°74104
Chloroforme ERBA N°438601
Tubes eppendorff stérils LES REF 89
Fibrotips Dnase free PROLABO
Microfuge I8 centrifuge BECKMAN COULTER
-métamercaptoéthanol SIGMA M-6250
Après la trypsination reprendre le culot avec 10ml de PBS
Centrifuger 5 min 2000rpm
Enlever le surnagent
Tapoter le culot cellulaire pour le désagréger (augmentation du rendement)
Ajouter 1 ml de Trizol à 5 à 30 millions de cellules au maximum.
Homogénéiser à l’aide d’une pipette
Attendre 15 min avant d’extraire sur colonne sinon congeler les cellules en trizol à –80°C
TRAVAILLER TOUJOURS DANS LA GLACE
LE PORT DES GANTS LATEX EST INDISPENSABLE
Décongeler et homogénéiser le mélange cellules-Trizol
Ajouter 200 µl de chloroforme spécial ARN à 1 ml de Trizol (pour mieux aspirer le chloroforme : pipeter-jeter-repipeter)
Homogénéiser par agitation vigoureuse à la main pendant 15 sec
Incuber 3 min à température ambiante
Centrifuger pendant 15 min à 13000 rpm à 4°C, en ce moment :
préparer dans un tube Falcon stérile 15 ml :
* 1ml du tampon RLT dilué avec -mercapthoéthanol (RNAse Free).
La dilution se fait sous hôte chimique : 1 ml de tampon RTL pour 10µl de et la solution est stable 1 mois
* Ajouter 1ml de la solution d’éthanol 70° (Tiroir 1 à –20° C).
Homogénéiser par pipetage
Ajouter le surnageant (phase supérieure) sans toucher l’interphase (protéines) dans un tube Falcon stérile 15
Ajouter 700 µl au maximum du mélange sur une colonne
Centrifuger 15 sec à 13000 rpm pour fixer l’ARN
Jeter le liquide qui se trouve dans le tube de collection
Mettre le reste de l’échantillon si le volume est > 700 µl et recentrifuger.
Protocole d’extraction de l’ARN sur colonne QIAGEN (page 2)
Ajouter 700 µl du tampon RW1 dans la colonne
Centrifuger 15 sec à 13000 rpm pour éliminer les impuretés
Jeter le tube de collection et le liquide qui se trouve dedans.
Transférer la colonne dans un nouveau tube de collection de 2 ml
Mettre 500 µl du tampon RPE dilué dans la colonne
(Pour la dillution du RPE, ajouter 44 ml d’éthanol pour 11 ml de RPE)
Centrifuger 15 sec à 13000 rpm pour laver les cellules
Jeter le liquide
Ajouter 500 µl du tampon RPE dilué
Centrifuger 2 min à 13000 rpm
Jeter le liquide contenu dans le tube de collection
Mettre la colonne dans un nouveau tube de 2 ml et centrifuger 1 min à 13000 rpm pour éliminer les résidus du tampon RPE
Transférer la colonne dans un tube Eppendorf stérile sur lequel est marqué le nom de l’échantillon
Déposer 30 µl de Rnase-free water directement sur la membrane de la colonne
Centrifuger 1 min à 13000 rpm
L’ARN est maintenant élué dans le tube Eppendorf
Doser l’ARN ( Si la quantité d’ARN espérée est > 30 µg, répéter l’élution avec un second volume d’eau)